domingo, 14 de febrero de 2016

FORMOL

UNIVERSIDAD NACIONAL DE CHIMBORAZO
FALCULTAD DE CIENCIAS DE LA SALUD
ESCUELA  DE LABORATORIO CLÍNICO E HISTOPATOLÓGICO

CATEDRA DE:
TÉCNICAS HISTOLÓGICAS

DOCENTE:
LIC. IVÁN PEÑAFIEL

GRUPO: N° 4

TERCER SEMESTRE

PERIODO ACADÉMICO: OCTUBRE 2015- FEBRERO 2016



RIOBAMBA – ECUADOR


FORMOL

Objetivos
Objetivos Generales:
Conocer todas las generalidades y cualidades del formol.
Objetivos específicos:
·         Reconocer las características generales que posee el Formol, mediante un estudio del mismo para así poder identificar aspectos generales como la importancia y peligrosidad.
·         Determinar los riesgos que produce el formol en nuestro organismo mediante recopilación de información para poder prevenir utilizando las medidas y normas de uso personal
·         Conocer las ventajas y desventajas al momento de utilizar el formol como fijador de tejidos.
·         Identificar como se forma el formol bufferado al 10%
MARCO TEÒRICO:
El formaldehído es un gas incoloro, inflamable a temperatura ambiente. Tiene un olor penetrante característico y en niveles altos puede producir una sensación de ardor en los ojos, la nariz y los pulmones. El formaldehído se conoce también como metanal, óxido de metileno, oximetileno, aldehído metílico y oxometano. El formaldehído puede reaccionar con muchas sustancias químicas, y a temperaturas muy altas se degradará a metanol (alcohol de madera) y monóxido de carbono.
Nuestros cuerpos producen cantidades pequeñas de formaldehído en forma natural como parte del metabolismo diario normal; estas cantidades pequeñas no son perjudiciales. También se puede encontrar formaldehído en el aire que respiramos en el hogar y el trabajo, en los alimentos que comemos y en algunos productos que usamos en la piel. Una fuente importante de formaldehído que respiramos diariamente se encuentra en el smog en la capa inferior de la atmósfera. El escape de automóviles con convertidores catalíticos o de automóviles que usan gasolina oxigenada también contiene formaldehído. En el hogar, el formaldehído es producido por cigarrillos y otros productos de tabaco, estufas de gas y chimeneas abiertas al aire. El formaldehído también se usa como preservativo en algunos alimentos tales como algunos quesos italianos, alimentos desecados y pescados. El formaldehído se encuentra en muchos productos que se usan diariamente en el hogar, por ejemplo, antisépticos, medicamentos, cosméticos, líquidos para lavar platos, suavizadores de telas, artículos para el cuidado de zapatos, limpiadores de alfombras, pegamentos y adhesivos, barnices, papel, plásticos y en algunos productos de madera. Algunas personas están expuestas a niveles altos de formaldehído si viven en una casa móvil nueva, ya que los productos de madera que se usan en este tipo de casas emiten formaldehído.
Se trata del fijador más comúnmente utilizado, en la rutina de los laboratorios de histología y anatomía patológica. El formaldehido preserva la estructura general de la celula y componentes extracelulares al reaccionar con grupos aminos primarios y también con otros grupos de las cadenas de aminoácidos (aminas, anillos aromáticos y grupos guanidina). El formaldehido apenas reacciona con los lípidos y, por lo tanto, es un mal fijador de membranas celulares. La reacción del formaldehido es reversible si se aplica un exceso de agua, especialmente durante las primeras 24 horas, a diferencia de la del Glutaraldehído, que es rápida e irreversible. En su versión comercial, la formalina (o formol) se presenta como una disolución de formaldehido al 37% - 40% en volumen, que normalmente contiene impurezas de metanol y ácido fórmico.

Propiedades Físicas       

Estado de agregación Gas
Apariencia Incoloro
Densidad 820 kg/m3; 0,82 g/cm3
Masa molar 30,026 g/mol
Punto de fusión 181 K (-92 °C)
Punto de ebullición 252 K (-21 °C)
USOS
El formaldehído es uno de los compuestos orgánicos básicos más importantes de la industria química. 
Se utiliza en la producción de diversos productos, desde medicamentos hasta la melamina, la baquelita etc. Antiguamente se utilizaba una disolución del 35% de formaldehído en agua como desinfectante. En la actualidad se lo utiliza para la conservación de muestras biológicas y cadáveres frescos, generalmente en una dilución al 5% en agua.
Se utiliza como conservante en la formulación de algunos cosméticos y productos de higiene personal como champúes, cremas para baño, sales iodicas para la higiene íntima femenina. Se está utilizando también en los famosos Alisados permanentes, pero su uso en estos productos se ha prohibido ya en algunos países debido al alto riesgo para la salud de quien trabaja con ellos habitualmente.
Además se usa en síntesis orgánica, para producir abonos, papel, madera contrachapada, resinas de urea-formaldehído, colorantes explosivos, y en la fabricación de extintores de incendio entre otros usos.
Ventajas: Es el fijador más barato que existe por lo tanto es de elección para los  trabajos de rutina en Anatomía patológica.
ü  Es un buen fijador único que determina una moderado conversación de la estructura tisular.
ü  Por ser buen desinfectante y no endurecer excesivamente los tejidos, es un medio óptimo para conversar y almacenar biopsias y piezas quirúrgicas.
ü  Provoca escasa retracción tisular
ü  Posee una velocidad de penetración intermedia entre la de los alcoholes y la del sublimado
ü  Tiene aproximadamente una velocidad de un milímetro por hora apenas altera la coloración tisular, por eso es el agente de elección para fijar grandes piezas quirúrgicas.
ü  Es excelente fijador para el tejido adiposo y para lípidos en general y se emplea como agente de elección para fijar el tejido nervioso.
ü  El proceso de fijación puede ser acelerado o retrasado sin graves inconvenientes modificando la temperatura, así a temperatura ambiente se consigue un fijador completa a partir de las 36 horas. A 35º entre 12 y 24 horas y a 55ºC en solo 3 horas. Por este motivo la formalina es un fijador de elección cuando se emplean hornos de microondas en técnicas de histotecnología.
ü  Es compatible con la mayor parte de las tinciones que se utilizan rutinariamente en Anatomía patológica (Mindan, 2005).

Inconvenientes:
ü  Produce abundantes vapores de carácter irritante sobre la conjuntiva y mucosa nasal.
ü  Por acción de la luz y del oxígeno atmosférico se transforma progresivamente en ácido fórmico y ésta sustancia tiene la propiedad de disolver rápidamente la cromatina nuclear por eso con el paso del tiempo los núcleos celulares adoptan un aspecto fantasma para evitar este inconveniente el formol debe guardarse en frascos opacos o emplearse en forma de solución neutra o tamponado.
ü  Posee una relativa capacidad de fijación sobre las proteínas, los pigmentos que contienen hierro y los derivados de la bilirrubina, a éstos últimos les da una coloración verdosa.
ü  Tras la utilización prolongada de formalina debido a que se convierte en ácido fórmico confiere a las piezas un tinte grisáceo y en tejidos que tienen mucha sangre da origen a un pigmento formólico que es negro o pardo oscuro que precipita en aglomeraciones irregulares sobre estructuras preexistentes.

Formol tamponado: Es la solución más empleada hoy en día para prevenir el choque osmótico que provoca la disolución de formalina en agua destilada y el depósito de pigmento formólico que ocurre a un pH inferior a 6. Se prepara de la siguiente manera, como amortiguador se emplea el tapón fosfato calibrado con pH de 7.0 a 7.2 de la siguiente fórmula:
ü  FORMALINA PURA…………………………………..100.0 ml.
ü  FOSFATO SÓDICO MONOBÁSICO…………………….4.0 gr.
ü  FOSFATO SÓDICO DIBÁSICO (ANHIDRO**)……..….6.5 gr.
ü  AGUA DESTILADA………………………………...….900ml.

Se emplea fundamentalmente para fijar tejidos nerviosos.
RIESGOS PARA LA SALUD:
El formol debido a su volatilidad, se descompone rápidamente en el cuerpo y en la atmósfera, ya que se degrada en presencia de la luz solar en CO2 y H2O. De esta forma, no se acumula en el ambiente o en los seres vivos.
El uso y manipulación de estos productos se ha prohibido en algunos países debido al alto riesgo para la salud de quienes trabajan con ellos habitualmente. El uso del formaldehído puede producir irritación en la piel, ojos, nariz y garganta. Si se ingiere en grandes cantidades puede causar dolor, vómitos, coma e incluso la muerte a partir de 30 ppm o miligramos por litro.
Sustancia tóxica por inhalación, ingestión y contacto. Posiblemente carcinógeno para los seres humanos.
La manipulación del formol en las diversas operaciones hace que se pueda emitir al ambiente formaldehído que puede ser inhalado y entrar en contacto con los ojos y la piel del trabajador. También se pueden producir derrames y salpicaduras de formol que pueden afectar a los ojos y la piel.
Por inhalación:
Gran irritación de las fosas nasales, garganta, laringe y bronquios, pudiendo llegar, con frecuencia, a provocar síntomas pulmonares graves (edema agudo de pulmón). Son frecuentes la tos, coloración azulada de piel y mucosas, sensación de falta de aire, y aumento de la mucosidad respiratoria. En ocasiones aparecen hemorragias nasales, dolor al tragar, edema de laringe con síntomas inmediatos de asfixia y dolor torácico con esputo sanguinolento. Puede llegar a provocar trastornos de la tensión arterial, arritmias cardíacas, coma y muerte. Es depresor del sistema nervioso central. Puede provocar acidosis metabólica. Con alguna frecuencia da reacciones de tipo asmático. Puede dejar secuelas respiratorias. La intoxicación puede ser mortal por varios mecanismos diferentes.
Por contacto:
Causa una importante irritación de la piel y los ojos, con posibilidad de producir lesiones cáusticas (quemaduras químicas). Cuando existen salpicaduras oculares puede causar una gran conjuntivitis, con ojo rojo, sensación de aversión a la luz, gran dolor y visión borrosa, pudiendo provocar quemaduras cornéales. Por vía cutánea, al margen de las lesiones señaladas puede absorberse en limitadas proporciones.
Por ingestión:
Es muy irritante para el tubo digestivo, causando con frecuencia sensación de ardor en la boca, garganta y estómago, y a veces dolor torácico o al tragar. Se produce abundante cantidad de saliva, náuseas, en ocasiones vómitos (que pueden ser con sangre), dolor abdominal y rara vez diarrea. Con el paso del tiempo aparece sensación de mareo, vértigos, obnubilación, somnolencia, y depresión del sistema nervioso central. Pueden producirse perforaciones esofágicas o gástricas en caso de grandes 2 concentraciones. Puede llegar a provocar la muerte. Puede ser responsable de fallo renal. Puede provocar acidosis metabólica.
Daños para la salud:
Aunque la tarea de tallado puede comportar otros riesgos, aquí se tratarán principalmente los derivados de la exposición a formaldehído.
La principal vía de entrada del formaldehído en el organismo es la vía inhalatoria, la absorción cutánea es reducida y la ingestión accidental es muy poco probable.
En el Sistema Inmunitario: El formaldehído es alérgeno, tiene acción sensibilizante, es decir, por inhalación o contacto directo puede ocasionar una reacción de hipersensibilidad, y, exposiciones posteriores incluso de muy baja concentración, pueden causar reacciones alérgicas severas de la piel (dermatitis de contacto), los ojos, el tracto respiratorio (edema laríngeo y bronco espasmo) e incluso generalizadas como el choque anafiláctico.
En el Sistema Respiratorio: Es muy irritante. Según la concentración ambiental los efectos van desde hormigueo en la nariz y garganta por irritación, a sensación de quemazón, tos seca y dolorosa, edema, y en casos extremos neumonitis y muerte. Se han descrito efectos crónicos como: irritación crónica, patología respiratoria crónica (bronquitis crónica), alteración de funciones respiratorias y exacerbación de asma preexistente, pero no se puede asegurar la relación directa de estos signos con el formaldehído.
En la Piel: Es muy irritante. Según la concentración los efectos por contacto pueden ser: irritación con eritema y picazón, endurecimiento, edema, vesiculación y descamación o bien efecto corrosivo pudiendo causar quemaduras graves. Si hay sensibilización previa, dermatitis de contacto.
En los Ojos: Produce irritación desde concentraciones muy bajas. Los efectos son desde pequeñas irritaciones de ojos y párpados, lagrimeo, escozor/dolor y visión borrosa a quemaduras graves con ulceraciones (daños permanentes) en caso de contacto directo por salpicaduras.
En el Sistema Nervioso Central (SNC): Se pueden producir efectos como irritabilidad, alteraciones del sueño, la memoria, el equilibrio y destrezas, fatiga, mareo, náuseas y dolor de cabeza.
Se sospecha que provoca cáncer ¡AVISO!. Se le relaciona con cáncer nasofaríngeo, y también con seno-nasal, leucemia mieloide y pulmonar. Está clasificado de categoría 2 según el Reglamento (CE) 1272/2008, y de categoría 1 (carcinógeno en humanos) según IARC (International Agency for Research on Cancer).
Primeros auxilios:
Retirar al paciente del ambiente contaminado, manteniéndolo en reposo. Retirar las ropas impregnadas y lavar la piel con agua durante 10-15 minutos. Lavar los ojos con abundante agua durante 15 minutos, abriendo bien los párpados y dejando que el agua arrastre el producto. Puede requerir respiración artificial.
Medidas para prevenir la exposición:
Se resumen brevemente las medidas adecuadas para la prevención de la exposición. Para laboratorios de Anatomía patológica.

Protección general y colectiva:

Para prevenir la exposición a formaldehído es necesario reducir al mínimo posible su presencia en el puesto de trabajo, proteger al trabajador frente a salpicaduras y contactos directos con la piel y establecer un plan de formación e información del personal que lo
maneja.Se debe evitar la existencia de fuentes de contaminación innecesarias, como recipientes abiertos y eliminar rápidamente los derrames.

Deben observarse procedimientos de trabajo adecuados, evitando la evaporación y la formación de aerosoles y manteniendo los recipientes cerrados. La utilización de vitrinas con encerramiento y aspiración forzada reduce la presencia de formaldehído, siendo preferible a la utilización de extracciones localizadas móviles, que también son recomendables en casos concretos. Por otra parte una adecuada renovación general del aire colabora a la minimización de las concentraciones residuales.
Existen también unidades portátiles de extracción que aspiran el aire a través de unos filtros impregnados con permanganato potasio que fija químicamente. Estas unidades son especialmente útiles para eliminar el aldehido en salas de almacenaje de piezas pequeñas fijadas con formaldehído.

Equipos de protección individual (EPI)

La utilización de EPI implica el establecimiento de un programa para su adecuada gestión, desde la decisión de su utilización, hasta la formación e información a los usuarios y deberá tenerse en cuenta especialmente lalegislación existente al respecto, los RRDD de comercialización y de disposiciones mínimas de seguridad y salud para su utilización, no olvidándose nunca el carácter de "ultima protección" que tienen.

Los EPI recomendados generalmente para trabajar con formaldehído son los que protegen de contacto dérmico, como guantes, y de salpicaduras, como guantes, delantales, gafas y mascara facial. Si se pretende evitar completamente la inhalación de vapores, debe recurrirse a la utilización de equipos de protección respiratoria incluyendo filtros químicos del tipo AX. Consultar siempre su adecuación al fabricante y leer detenidamente el folleto explicativo.

Bibliografía:
http://www.beautymarket.es/peluqueria/el-uso-del-formol-peligroso-o-no-peluqueria-3548.php 

miércoles, 9 de diciembre de 2015

FIJADORES QUE TIENEN FORMOL

AQUELLAS QUE CONTIENEN FORMOL
Liquido de Bouin: Solución muy usada como alternativo a la formalina cuando queremos fijar ciertos Tejidos como piel órganos endocrinos, testículos y tejido embrionario en general. Sin embargo no está fijado para la fijación de biopsias renales sobre los cuales provoca una severa distorsión.
Se prepara de la siguiente manera:
SOLUCIÓN ACUOSA DE ÁC. PÍCRICO
ü  (ÁC. PÍCRICO AL 1-2% EN AGUA DESTILADA)……..750.0 ml.
ü  FORMALINA CONCENTRADA………………………250.0 ml.
ü  ÁC. ACÉTICO GLACIAL……………………………….50.0 ml.
ü  PH. FINAL…………………………………………………2.2
ü  TIEMPO DE FIJACIÓN……………………………..2 a 24 horas

§  Fijador de Bouin-Hollander: es una variante del líquido de Bouin especialmente indicado para la fijación de los cilindros de biopsia de médula ósea cuando no es posible controlar el tiempo de fijación de la muestra en éste líquido, la conservación, puede incluso conservar las 48 horas sin que se produzca excesivo endurecimiento.
Se prepara de la siguiente manera:
§  ACETATO NEUTRO DE COBRE………….……………2.5 gr.
§  ÁC. PÍCRICO……………………………………………..4.0 gr.
§  FORMALINA CONCENTRADA……………………....10.0 ml.
§  ÁC. ACÉTICO GLACIAL……………………….……….1.5 ml.
§  AGUA DESTILADA…………………………………..100.0 ml.
Para preparar la solución se disuelve primero la sal de cobre en el agua destilada luego se añade el ácido pícrico y tras filtrarlos el formol y el ácido acético glacial.
Esta solución se conserva indefinidamente a temperatura ambiente el tiempo de fijación oscila entre 48-72 horas y sigue las mismas precauciones que el líquido de Bouin
Bouin alcohólico (fijador de Dubosq-Brasil): Es una alternativa de líquido de Bouin cuando la pieza que se debe fijar es relativamente voluminosa porque posee una velocidad de penetración mucho más elevada. Se utiliza también cuando se precisa una fijación específica de sustancias hidrosolubles como el glucógeno ya que evita su disolución.
Se prepara de la siguiente manera:
ü  ALCOHOL ETILICO 80%...............................................75.0 ml.
ü  ÁC. PÍCRICO………………………………………………0.5 gr.
ü  FORMALINA CONCENTRADA………………...……..30.0 ml.
ü  ÁC. ACÉTICO GLACIAL……………………………..….7.5 ml.
Mezclar antes de usar el tiempo medio de fijación para fragmentos con un espesor en torno a 5 milímetros es de 2 a 3 horas.
Liquido de Gendre: Es una variación que está especialmente diseñada para la fijación del glucógeno y pigmentos derivados de la hemoglobina. Se prepara por:
ü  SOLUCIÓN SATRUADA DE ÁC. PÍCRICO
ü  EN ALCOHOL ETÍLICO AL 70%.....................................80.0 ml.
ü  FORMALINA CONCENTRADA………………………...15.0 ml.
ü  ÁC. ACÉTICO GLACIAL………………………………….7.5 ml.
El tiempo de fijación oscila entre 1 y 4 horas. Tras acabar el proceso debe realizarse sucesivamente 2 lavados cortos en etanol al 80, 95 y 100º
Fijador de Müller: Es la disolución acuosa de un fijador simple de dicromato potásico con la adición de sulfato sódico su importancia actual radica en que se emplea para fabricar los fijadores de Orth y de Zenker. Lo que llamamos solución madre. Está compuesta de:
ü  DICROMATO POTASICO…………………………………2.5gr.
ü  SULFATO SÓDICO………………………………………..1.0 gr.
ü  AGUA DESTILADA ……………………………………100.0 ml.
Tiempo de fijación 4 y 8 horas. Tras la fijación es necesario lavar abundantemente en agua corriente durante unas horas.
Fijador de Orth: Hoy día se emplea exclusivamente en ciertas técnicas de fijación de tejido nervios. Se prepara de la siguiente manera:
ü  Solución stock de Orth: idéntica a la composición del fijador de Müller.
ü  Solución de trabajo: en el momento de su uso se mezclan:
ü  SOLUCIÓN STOCK………………………………..90.0 ml.
ü  FORMULINA CONCENTRADA………………….10.0 ml.
El tiempo de fijación de tejido nervioso es de 48 horas y tras el proceso de fijación los tejidos han de ser lavados abundantemente en agua y almacenados en alcohol etílico al 70%
Solución de B-5 y Zenker-Formol (Liquido de Nelly): Ambas mezclas son en esencia casi idénticas. La denominación B5 corresponde en realidad a una modificación de la de Zenker.
La solución de Zenker-formol contiene dicromato potásico y sulfato sódico. La mayor utilidad de estos fijadores es que mejoran considerablemente la tinción nuclear, de hecho la fijación en una mezcla que contenga sublimado es hoy día prácticamente imprescindible para el diagnóstico morfológico en las patologías del sistema linfoide y hematopoyético. Además estas soluciones B5 zenker formol son los fijadores de elección para el riñón, hígado, fibras de tejido conectivo y para fibrina.
Se prefiere la solución de B5 porque al no contener dicromato, esto permite una mejor conservación de la cromatina nuclear y de la estructura antigénica tisular.
Solución de 35:
*Solución stock de B5: Esta mezcla es estable durante bastante tiempo pero concentrado en frasco opaco y oscuridad.
ü  CLORURO MERCÚRICO...………………………………… 12.0 gr.
ü  ACETATO SÓDICO...………………………………………….2.5 gr.
ü  AGUA DESTILADA C.S.P…………………………………….200 ml.
Solución de trabajo de B5: Esta solución es inestable debido a que el formaldehído reduce el sublimado a cloruro mercurioso y mercurio metálico que se depositan en forma de un precipitado blanco grisáceo, por este motivo y por el elevado índice de endurecimiento que posee el sublimado, el tiempo de fijación no debe superar las 4 horas. Además el espesor máximo de las muestras no debe superar los 4 mm debido al escaso poder de penetración de la mezcla fijadora. Debido a la aparición de precipitados mercúricos sobre los tejidos las secciones histológicas antes de ser coloreados. Han de ser sometidas a un tratamiento específico mediante soluciones que eliminan estos depósitos. Tras la fijación los tejidos se pueden conservar indefinidamente en alcohol etílico al 70-80%
ü  SOLUCIÓN STOCK DE B5…………………………………20.0 ml.
ü  FORMALINA CONCENTRADA ………………………….…2.0 ml.
Solución de Zenker-Formol Eliminación del pigmento mercúrico:
*Solución stock de Zenker:
ü  CLORURO MERCÚRICO………………………………………5gr.
ü  DICROMATO POTÁSICO……………………………….…..2.5 gr.
ü  -SULFATO SÓDICO ……………………………………………1 gr.
ü  AGUA DESTILADA C.S.P. ……………………..………..100.0 ml.
* Solución de trabajo: en el momento de su uso mezclamos:
ü  SOLUCIÓN STOCK DE ZENKER…………………………..95 ml.
ü  FORMALINA CONCENTRADA……………………………...5 ml.
Tanto para la solución almacenada como para la de trabajo deben guardarse las mismas precauciones que para la de B5
Eliminación del pigmento mercúrico o deszenkerización:
Se realiza tratando las secciones histológicas antes de su coloración con soluciones yodadas y utilizamos:
*Solución de LUGOL:
ü  YODURO POTÁSICO…………………………………………..2gr.
ü  CRISTALES DE YODO ………………………………………..1gr.
ü  ALCOHOL ETÍLICO 70-80%................................................100 ml.
*Solución de tiosulfato sódico:
ü  TIOSULFATO SÓDICO………………………………………..5gr.
ü  AGUA DESTILADA………………………………………...100ml.
Después de la desparafinación hay que tratar los cortes durante diez minutos con la solución yodada a continuación lavar bien en agua destilada después decolorar durante dos minutos en la solución en agua corriente durante 10 minutos antes de realizar la coloración.
AQUELLAS QUE NO CONTIENEN FORMOL
Líquido de Zenker: Trata de combinar los efectos favorables del sublimado y del dicromato potásico. En la práctica habitual ha sido sustituido por B5. Su empleo ha quedado prácticamente restringido al proceso de refinación-decalcificación a que son sometidas las biopsias de médula ósea cuando se realiza una fijación inicial con B5.
 Se prepara de la siguiente manera.
ü  SOLUCIÓN STOCK DE ZENKER………………………………95.0 ml.
ü  ÁC. ACÉTICO GLACIAL……………………………………..… 5.0 ml.
El ácido acético reacciona con el dicromato y hace que la solución se oscurezca progresivamente, por lo que debe recomponerse antes de su uso.
El tiempo de fijación puede ser más prolongada que con la solución de b5 porque el ácido acético que contiene, produce un excesivo endurecimiento. Pero no se deben sobrepasar las 48 horas. Tras la fijación el material debe ser tratado con sulfato sódico al 5% durante 1-2 horas.
Liquido de Carnoy: Es el mejor fijador conocido para el glucógeno y en general, para los hidratos de carbono simples y para proteínas fibrilares y sobre todo miofibrillas, su acción fijadora es extremadamente rápida deshidratando el tejido al mismo tiempo, sin embargo produce una excesiva retracción mística y una hemólisis masiva de eritrocitos así como una pobre conservación estructural del ADN. Está compuesta por:
ü  ETANOL ABOSLUTO…………………………………………..60.0 ml.
ü  CLOROFORMO………………………………………………….30.0 ml.
ü  ÁC. ACÉTICO GLACIAL………………………………………..10.0 ml.
El tiempo de fijación puede ser acortado hasta 3 horas. Las muestras deben cambiarse directamente a alcohol etílico absoluto. El mayor endurecimiento se produce al prolongar demasiado la deshidratación en alcohol, para prevenirlo se puede sustituir el etanol por metanol en la composición de líquido fijador, que además provoca menor retracción tisular, y para conservar la pieza se deposita en alcohol etílico absoluto.
Lavado postfijación.
Es el aclarado que se realiza después del proceso de fijación para eliminar los residuos del agente fijador, con el fin de limitar el tiempo de contacto entre el fijador y el tejido o impedir el contacto del fijador con los medios de inclusión utilizados, para proseguir el tratamiento de la muestra, a veces algunos colorantes alteran su efecto si la pieza contiene restos de determinados fijadores, como es el caso por ejemplo del ácido pícrico. No todos los fijadores deben lavarse igual:
ü  Las piezas fijadoras en formalina se lavan con agua prolongadamente.
ü  Fijadas por ácido pícrico hay que introducir las piezas hasta quitar color amarillo.
ü  Fijadas por tricloroacético hay que introducirlas en alcohol de 90%.
Conservación de tejidos.
Cuando se practica un estudio histológico, solo se incluyen una pequeña porción del material remitido para el análisis. El resto se guarda de reserva para estudios complementarios. Casi nunca es posible conservar el tejido en el mismo líquido utilizado para la fijación.
La solución conservante más indicada en la mayor parte de los casos es el alcohol etílico al 70% en él además de iniciarse la deshidratación, el tejido una vez fijado puede conservarse durante meses sin apenas sufrir cambios, como alternativa más simple y siempre que no se desee preservar el tejido para posteriores estudios inmunohistoquímicos, pueden usarse como conservante una solución de formalina neutra o tamponada al 10%.
Cuando lo que se produce exclusivamente es derramar la intrusión del tejido en parafina sobre todo para pequeñas muestras delicadas se puede realizar la deshidratación completa en alcoholes crecientes y conservarlos en butanol que permite una conservación indefinida y mejora la textura tisular.
Cuando se deseen conservar órganos completos procedentes de necropsias podemos utilizar las soluciones de JORES.
JORES I:
ü  SULFATO SÓDICO……………………………………………………….22 gr.
ü  SULFATO POTÁSICO……………………………………………………..1 gr.
ü  CLORURO SÓDICO………………………………………………………..9 gr.
ü  BICARBONATO SÓDICO…………………………………………….….18 gr.
ü  FORMOL 10%.............................................................................................50 ml.
ü  SOLUCION ACUOSA SATURADA DE HIDRATO DE CLORAL…….50 ml.
ü  AGUA DESTILADA C.S.P.……………………………………………1000 ml.
JORES II:
ü  ACETATO POTÁSICO…………………………………………………300 gr.
ü  GLICERINA…………………………………………………………….600 ml.
ü  AGUA DESTILADA C.S.P. ………………………………………..1000 ml.
En recipiente bien cerrado se conserva hasta años.
Resultados de la fijación y su interpretación.
Durante la fijación se producen procesos que modifican la estructura tisular; se producen desgarros en tejidos que siendo de distinta estructura están en contacto, por ejemplo la muscular y la submucosa y al exponerlos a cambios bruscos, como tienen distintos contenidos, en agua se contraen más que otros. También se producen grietas por la misma causa que los desgarros, pero son pequeñas aberturas que pueden dar lugar a error porque parecen naturales, son muy difíciles de evitar y son más frecuentes cuando la fijación se hace en tejidos que ya han comenzado su descomposición.

Estas deformaciones de los tejidos que no corresponden con la realidad y son producidas por la agresividad de los fijadores se denominan artefactos y varían de un fijador a otro debido a las características propias de cada uno.
CONCLUSIONES
·         Se determinó que el correcto conocimiento de los fijadores con o sin formol ayudara a un procedimiento de fijación en distintas muestras de órganos.
·         El conocer las ventajas y desventajas que producen estos fijadores ayudara a tener las debidas precauciones al momento de utilizados en muestras.
·         El conocimiento adecuado de la composición de los fijadores ayudara a identificar la capacidad de fijación de estos en distintas muestras.
·         Se concluyó que se debe tener en cuenta el tiempo de exposición del personal del Laboratorio de Anatomía Patológica ante los fijadores ya que son tóxicos y esto puede ser perjudicial para la salud del personal que labora en esta área.

RECOMENDACIONES
·         Debe tenerse en cuenta el tiempo específico de fijación de acuerdo al fijador que estemos usando, para evitar se dañe la muestra.
·         El líquido fijador debe ser colocado con rapidez en la muestra.
·         Deberá elegirse el fijador más conveniente de acuerdo a la muestra que tengamos.
·         Es recomendable efectuar la fijación a bajas temperaturas.
·         Después de terminado el proceso de fijación, se deberá lavar la muestra, evitando así que los tejidos se endurezcan.
BIBLIOGRAFÍA
*      Google Books, (2015). Tecnico Especialista en Anatomia Patologica Del Servicio Gallego de Salud.volumen i Ebook. [online]Disponible en: https://books.google.com.ec/books?id=r7hL2GosWjYC&printsec=frontcover&dq=fijadores+histologicos+pdf&hl=es&sa=X&ved=0ahUKEwia2fehq7zJAhXF4SYKHVA-CYQQ6AEIIjAB#v=onepage&q&f=false [Accessed 3 Dec. 2015].
*      TEJIDOS, P. (2013). PROCESAMIENTO DE TEJIDOS[online] Nancycepedablogs.blogspot.com. Disponible en: http://nancycepedablogs.blogspot.com/ [Accessed 3 Dec. 2015].
*      Anon, (2015). [online] Available at:
http://www.seapcongresos.com/2011/SEAP/19_mayo_jueves/Anfiteatro/08.00/Dolores_Isabel.pdf [Accessed 3 Dec. 2015].